Vírusoid

A Wikipédiából, a szabad enciklopédiából

A vírusoidok körkörös, egyszálú RNS-ek, melyeknek a replikációhoz és a kapszidképzéshez víruson belül kell lenniük.[1] Genomjuk néhány száz (200-400) nukleotidból áll, és nem kódol fehérjét.

A vírusoidok gyakorlatilag helpervírus-fehérjeburokban lévő viroidok, amelyek így hasonlítanak a viroidokra a replikáció módjában (gördülőkör-replikáció) és abban, hogy nincsenek bennük gének, azonban abban különböznek, hogy a viroidokat nem veszi körül fehérjeburok. Mind a viroidok, mind a vírusoidok pörölyribozimet kódolnak.

A vírusoidok, noha a virológia foglalkozik velük, szubvirális részecskének számítanak, nem pedig vírusnak. Mivel segédvírusoktól függnek, szatellitnek számítanak. A vírusoidok a virológiai taxonómiában a Szatellitek/Szatellit-nukleinsavak/3. alcsoport: Körkörös szatellit-RNS(-ek) csoport listájában szerepelnek.[2]

Definíció[szerkesztés]

A fogalom körétől függően a vírusoid fogalma magába foglalhatja a hepatitis D-vírust (HDV) is. A növényi vírusoidokhoz hasonlóan a HDV kerek, egyszálú, és helper vírus segítségével (hepatitis B) képez viriont, azonban a virionoknak sokkal nagyobb a genomja (kb. 1700 nt), és fehérjét kódolnak.[3][4] Ezenkívül nem mutatnak szekvenciahasonlóságot a növényvírusoid-csoporttal.

Történet[szerkesztés]

Az első vírusoidot R2 dohánymozaik-vírussal fertőzött Nicotiana velutina-növényekben fedezték fel.[5][6] Ezen RNS-eket nevezték még „viroidszerű” RNS-eknek is, és a kereskedelemben és a mezőgazdaságban fontos növényeket fertőzik, és nem önreplikáló egyszálú RNS-ek.[7] A vírusoidok RNS-replikációja hasonló a viroidokéhoz, de a viroidoktól eltérően a vírusoidoknak „segéd” vírus szükséges.

Replikáció[szerkesztés]

A vírusoid-RNS körkörös szerkezete ideális a gördülőkör-replikációhoz, ahol a genom több másolata jön létre hatékonyan egy replikációkezdés alatt.[8] Ennek további elődje, hogy az exonukleázok nem férnek hozzá, így ezeknek ellenállnak. Ezenkívül a magas GC-tartalom és nagy fokú önkomplementaritás az endonukleázokkal szemben is stabillá teszi. A körkörös RNS az RNS-foldingot korlátozza a replikációhoz megfelelő másodlagos szerkezet a ribozimmediált széttekeredés során keletkezőktől való eltérésétől.

A növényszatellit-RNS-ek és vírusoidok a megfelelő helper vírusaiktól függenek a replikáció tekintetében, és a helper vírusok pedig a növényektől függenek, hogy létrehozzák a replikációhoz szükséges komponenseket.[9] Ezért egy mindhárom fő szereplőt, a szatellitet, a helper vírusokat és a gazdanövényeket is igénylő komplex játék szükséges a szatellit-/vírusoidreplikációhoz.

Pörölyribozim vírusoidon kívül (2GOZ)

A satLTSV-replikációról kimutatták, hogy a szimmetrikus gördülőkör-mechanizmus végzi el,[10] ahol a satLTSV mind a (+), mind a (-) szálakat elvágja. A satLTSV (+) és (-) szálai egyaránt fertőzőképesek.[11] Mindazonáltal, mivel csak a (+) szál van az LTSV-részecskékben, az OAS-szekvencia és a másodlagos szerkezet feltételezések szerint csak a (+) szálon van jelen.

Gellatly et al., 2011 kimutatta, hogy az egész satLTSV-molekula szekvenciális és szerkezeti jelentőségű, ahol bármilyen, a vírusoid szerkezetét zavaró mutáció (inzertáció vagy deléció) megszüntetné a fertőzőképességét.[11] A molekulába kerülő idegen nukleotidok csak akkor maradhatnak, ha a satLTSV szerkezetét változatlanul hagyják. Ezenkívül a bekerülő idegen szekvenciák a későbbi generációkban eltűnnek, ami végül a vad típusú satLTSV-vé való visszaalakuláshoz vezet.

Ezért a satLTSV-RNS-ben az egész szekvencia fontosnak tűnik a replikációhoz, szemben a TBSV satRNS-ével vagy a hibás, interferáló RNS-ekkel,[12] ahol csak a megfelelő sorozatok vagy másodlagos szerkezetek kis részét találták elegendőnek a replikációhoz.

A ribozimszerkezetek szerepe a vírusoidok szétválásában és replikációjában[szerkesztés]

A vírusoidok szerkezete hasonlít a viroidokéra, mivel kétszálú hosszúkás, rövid terminális ágú natív másodlagos szerkezettel rendelkeznek.[13][14] Ezek pörölyribozimeket is tartalmaznak, melyek részt vesznek a gördülőkör-replikáció során történő autokatalitikus satRNS-szétválasztásban.[15] Feltételezések szerint a satLTSV pörölyribozim szerkezete csupán átmeneti, hasonlóan a Song és Miller által 2004-ben észlelt satRPV- (RPV szerotípusú sárga törpe-gabonapolerovírus)-RNS-hez.[16] Ez a szerkezet rövid III-as törzset tartalmaz, amit csak két nukleotid-bázispár stabilizál. Ez az instabil konformáció tehát a kétpörölyös szétválasztás elméletét támogatja. Ezek a szerkezetek hasonlók a CarSV-hez és a gőteribozimekhez,[17][18] ami a divergens RNS-ek közti ősi kapcsolatot támogatja. Collins et al. 1998-as tanulmányában arról számolt be, hogy a satRYMV-RNS dimerje hatékonyabban válik szét, mint a monomer, ami konzisztens a kétpörölyös szétválasztással. Abból, hogy a satRYMV a (+) szálban szétválik, de a (-) szálban nem, következik, hogy a satRYMV aszimmetrikus gördülőkör-replikációval sokszorozódik, hasonlóan más szobemovirális szatellitekhez, kivéve a satLTSV-t.[19]

Evolúciós eredet[szerkesztés]

I. csoportbeli intron (1grz)

Az olyan tulajdonságokat figyelembe véve, mint a kis méret, a körkörös szerkezet vagy a pörölyribozimek jelenléte, a viroidoknak a vírusokétól eltérő ősi evolúciós eredetük lehet.[20] Ugyanígy a szatellit-RNS-ek és a gazdavírusaik, gazdanövényeik és rovarvektoraik közti szekvenciahasonlóság hiányából következtetni lehet arra, hogy ezek a szatellit-RNS-ek spontán jöttek létre. Egy másik elmélet szerint a vírusfertőzések során készülő siRNS-eket és mikro-RNS-eket helpervírus-replikázok erősíthetik, ahol ezek a molekulák szatellit-RNS-ekké állhattak össze.

A vírusoidokat és a viroidokat összehasonlították az intronokkal méretbeli hasonlóságuk miatt. Feltételezések szerint a vírusoidok és viroidok az intronokból származtak.[21][22] Összehasonlították a viroidok (-) szálát és az U1 kis magi ribonukleoprotein-részecskéket (snRNP-k), feltételezve, hogy a viroidok kiszabadult intronok.[21][22][23][24] Dickson (1981) megfigyelte ezenkívül a viroidok és vírusoidok (+) és (-) szálai közti homológiáit.[25] Mi több, a vírusoidok és a viroidok számos szerkezeti és szekvenciahomológiát mutatnak az I. csoportbeli intronokhoz, például a Tetrahymena thermophila kivágódó intronjához.

Egy 2001-es tanulmány szerint a vírusoidok az Avsunviroidae – ahol szintén lehetnek pörölyribozimek – testvércsoportjaként önálló kládot alkothatnak. Azonban a tanulmányban említett elrendezés nem elérhető, ezért az eredmények nehezen megismételhetők.[26]

A vírusoidok és más körkörös RNS-ek ősi molekulák, amelyeket újult érdeklődéssel kutatnak.[27][28] A körkörös RNS-ekről számos funkciót derítettek ki, például a génexpresszió-modulációval, a miRNS-szivacsokként működő RNS-kötő fehérjékkel (RBP) való kölcsönhatással, az öregedéssel és számos emberi betegséggel, például a rákkal is összefüggésbe hozták.[29][30]

Fejlődése[szerkesztés]

Abouhaidar és társai 2014-es tanulmányukban leírták a fehérjetranszláció és mRNS-aktivitás eddig (2023) ismert egyetlen példáját a rizs-sárgamozaikvírus körkörös szatellit-RNS-ében (scRYMV).[31][32] Ezek alapján az scRYMV vírusoid szatellit-RNS-ként sorolható be, amely a transzláció és a replikáció modellrendszereként is működhet.

E szubvirális ágensek egy lehetséges alkalmazása a növények vírusos megbetegedéseinek biológiai kontrollágenseinek létrehozásához való vektorok létrehozása. A vektorrendszer használható az idegen gének replikációjához, túlexpressziójához és csendesítéséhez. Idegenexpresszió-vektor például a bambuszmozaikvírusszatellit-RNS (satBaMV),[33] amely 20 kDa-os P20 fehérjét kódoló nyitott leolvasási kerettel rendelkezik. Megfigyelték, hogy ha ezt a nem esszenciális nyitott leolvasási keretet idegen génnel cserélték le, ennek az idegen génnek a kifejeződése megemelkedett, vagy a gén túlkifejeződött.[33] A géncsendesítéshez bizonyos szatellit-RNS-alapú vektorok használhatók a szekvenciaspecifikus inaktivációhoz. A szatellit-dohánymozaikvírus (STMV) volt az első szubvirális ágens, amit szatellitvírus-indukált csendesítő rendszer (SVISS) kifejlesztéséhez használtak.[34]

Jegyzetek[szerkesztés]

  1. R. H. Symons (1991). „The intriguing viroids and virusoids: what is their information content and how did they evolve?”. Mol. Plant Microbe Interact. 4 (2), 111–21. o. DOI:10.1094/MPMI-4-111. PMID 1932808.  
  2. 3 - Satellites and Other Virus-dependent Nucleic Acids - Subviral Agents - Subviral Agents (2011) (angol nyelven). International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV)
  3. Abbas, Zaigham (2013. április 2.). „Life cycle and pathogenesis of hepatitis D virus: A review” (angol nyelven). World Journal of Hepatology 5 (12), 666–675. o. DOI:10.4254/wjh.v5.i12.666. ISSN 1948-5182. PMID 24409335.  
  4. Alves, Carolina (2013. április 2.). „Hepatitis Delta Virus: A Peculiar Virus” (angol nyelven). Advances in Virology 2013, 1–11. o. DOI:10.1155/2013/560105. ISSN 1687-8639. PMID 24198831.  
  5. Haseloff, James (1982. szeptember 23.). „Viroid RNAs of cadang-cadang disease of coconuts” (angol nyelven). Nature 299 (5881), 316–321. o. DOI:10.1038/299316a0. ISSN 1476-4687.  
  6. Randles, J.W. (1981. január 15.). „Studies on encapsidated viroid-like RNA I. Characterization of velvet tobacco mottle virus” (angol nyelven). Virology 108 (1), 111–122. o. DOI:10.1016/0042-6822(81)90531-6.  
  7. Francki, R. I. B. (1985. október). „PLANT VIRUS SATELLITES” (angol nyelven). Annual Review of Microbiology 39 (1), 151–174. o. DOI:10.1146/annurev.mi.39.100185.001055. ISSN 0066-4227.  
  8. Lasda, Erika (2014. december). „Circular RNAs: diversity of form and function” (angol nyelven). RNA 20 (12), 1829–1842. o. DOI:10.1261/rna.047126.114. ISSN 1355-8382. PMID 25404635.  
  9. Roossinck, M J (1992. június). „Satellite RNAs of plant viruses: structures and biological effects” (angol nyelven). Microbiological Reviews 56 (2), 265–279. o. DOI:10.1128/mr.56.2.265-279.1992. ISSN 0146-0749. PMID 1620065.  
  10. Sheldon, Candice C. (1993. június 1.). „Is Hammerhead Self-Cleavage Involved in the Replication of a Virusoid in Vivo?” (angol nyelven). Virology 194 (2), 463–474. o. DOI:10.1006/viro.1993.1285.  
  11. a b Duncan Gellatly, Kayvan Mirhadi, Srividhya Venkataraman and Mounir G. Abou Haidar. Structural and sequence integrity are essential for the replication of the viroid-like satellite RNA of lucerne transient streak virus. Journal of General Virology (2011), 92, 1475–1481.
  12. Rubino, L. & Russo, M. (2010). Properties of a novel satellite RNA associated with tomato bushy stunt virus infections. J Gen Virol 91, 2393–2401.
  13. Francki, R. I. B. (1987). Possible viroid origin: Encapsidated viroid-like RNA. In „The Viroids” (T. O. Diener, Ed.), pp. 205–218. Plenum, New York.
  14. Gast, F.-U., Kempe, D., Spieker, R. L., and Sanger, H. L. (1996). Secondary structure probing of potato spindle tuber viroid (PSTVd) and sequence comparison with other small pathogenic RNA replicons provides evidence for central non-canonical base-pairs, large A-rich loops, and a terminal branch. J. Mol. Biol. 262, 652–670.
  15. Symons, R. H. (1991). The intriguing viroids and virusoids: What is their information content and how did they evolve? Mol. Plant–Microbe Interact. 4, 111–121.
  16. Song, S. I. & Miller, W. A. (2004). Cis and trans requirements for rolling circle replication of a satellite RNA. J Virol 78, 3072–3082.
  17. Forster, A. C., Davies, C., Sheldon, C. C., Jeffries, A. C., and Symons, R. H. (1988). Self-cleaving viroid and newt RNAs may only be active as dimers. Nature 334, 265–267.
  18. Hernandez, C., Daros, J. A., Elena, S. F., Moya, A., and Flores, R. (1992). The strands of both polarities of a small circular RNA from carnation self-cleave in vitro through alternative double- and single-hammerhead structures. Nucleic Acids Res. 20, 6323–6329.
  19. Diener, T. O., 1981. Are viroids escaped introns? Proc. Natl. Acad. Sci. USA78(8), 5014–5015.
  20. Marie-Christine Maurel: À la frontière du vivant : les viroïdes. The Conversation, 2018. február 19. (Hozzáférés: 2018. február 20.)
  21. a b Dinter Gottlieb. Viroids and virusoids are related to group I introns. Proc. Nati. Acad. Sci. USA Vol. 83, pp. 6250-6254, September 1986
  22. a b R.F. Collins, D.L. Gellatly, O.P. Sehgal, M.G. 1998. Abouhaidar. Self-cleaving circular RNA associated with rice yellow mottle virus is the smallest viroid-like RNA. Virology, 241, pp. 269-275
  23. Diener, T.O., 1986. Viroid processing: a model involving the central conserved region and hairpin. I. Proc. Natl. Acad. Sci.USA 83 (1), 58–62.
  24. Diener, T.O., 1989. Circular RNAs: relics of precellular evolution? Proc. Natl. Acad. Sci. USA86 (23), 9370–9374.
  25. Dickson, E. (1981) Virology 115, 216-221.
  26. (2001. augusztus 1.) „Phylogenetic Analysis of Viroid and Viroid-Like Satellite RNAs from Plants: A Reassessment”. Journal of Molecular Evolution 53 (2), 155–159. o. DOI:10.1007/s002390010203. PMID 11479686.  
  27. Hsiao KY, Sun HS, Tsai SJ. Circular RNA - New member of noncoding RNA with novel functions. Exp Biol Med (Maywood). 2017 Jun; 242 (11): 1136-1141.
  28. Qu S, Zhong Y, Shang R, Zhang X, Song W, Kjems J, Li H. The emerging landscape of circular RNA in life processes. RNA Biol. 2017 Aug 3; 14 (8): 992-999.
  29. Litholdo CG Jr, da Fonseca GC. Circular RNAs and Plant Stress Responses. Adv Exp Med Biol. 2018; 1087: 345-353.
  30. Holdt LM, Kohlmaier A, Teupser D. Molecular roles and function of circular RNAs in eukaryotic cells. Cell Mol Life Sci. 2018 Mar; 75 (6): 1071-1098.
  31. Briddon RW, Patil BL, Bagewadi B, Nawaz-ul-Rehman MS, Fauquet CM. Distinct evolutionary histories of the DNA-A and DNA-B components of bipartite begomoviruses. BMCEvol Biol. 2010 Apr 8;10:97. doi: 10.1186/1471-2148-10-97.
  32. AbouHaidar, M.G., Venkataraman, S., Golshani, A., Liu, B., Ahmad, T., 2014. Novel coding, translation, and gene expression of a replicating covalently closed circular RNAof220nt.Proc.Natl.Acad.Sci.USA111(40),14542–14547
  33. a b Lin, N.S., Lee, Y.S., Lin, B.Y., Lee, C.W., Hsu, Y.H., 1996. The open reading frame of bamboo mosaic potexvirus satellite RNA is not essential for its replication and can be replaced with a bacterial gene. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93, 3138_3142.
  34. Gosselé, V., Faché, I., Meulewaeter, F., Cornelissen, M., Metzlaff, M., 2002. SVISS A novel transient gene silencing system for gene function discovery and validation in tobacco plants. Plant J. 32, 859-866.

Fordítás[szerkesztés]

Ez a szócikk részben vagy egészben a Virusoid című angol Wikipédia-szócikk ezen változatának fordításán alapul. Az eredeti cikk szerkesztőit annak laptörténete sorolja fel. Ez a jelzés csupán a megfogalmazás eredetét és a szerzői jogokat jelzi, nem szolgál a cikkben szereplő információk forrásmegjelöléseként.

További információk[szerkesztés]